Abstrakt vědeckého článku o klinické medicíně, autor vědecké práce – Irina Valerievna Khutoryanina, Oleg Solomonovich Dumbadze, Lyudmila Leonidovna Dimidova
Problém znečištění životního prostředí nyní nabyl globálního významu. Vajíčka helmintů v tekutém hnoji umístěná v otevřených usazovacích nádržích v říjnu až listopadu zůstávají životaschopná po dobu 12 nebo více měsíců a v hnoji v období jaro-léto – 4-5 měsíců. V důsledku toho představuje nedezinfikovaná kejda v zimě i v létě vážnou hrozbu kontaminace vodních ploch, půdy, podzemních vod, krmiva a pastvin patogeny nebezpečnými pro lidi a zvířata. Tato okolnost určuje nutnost dezinsekce hnoje všech kategorií. Na základě výše uvedeného bylo účelem práce analyzovat stávající způsoby dezinsekce hnoje a hnoje. Všechny způsoby odčervování (dezinsekce) hnoje a jeho frakcí lze rozdělit do tří skupin: biologické, fyzikální a chemické. Obecně se uznává, že biologické metody rozkladu organického odpadu jsou považovány za ekologicky přijatelné a nákladově efektivní. Některé z analyzovaných fyzikálních a chemických metod mají také určitou dezinfekční účinnost. Při použití těchto skupin dezinfekčních prostředků je nutné neustálé sledování a dodržování technologických parametrů, dále je třeba dodržovat spotřeby dezinfekčních prostředků a dobu expozice.
Podobná témata vědecké práce v klinické medicíně, autorka vědecké práce – Khutoryanina Irina Valerievna, Dumbadze Oleg Solomonovich, Dimidova Lyudmila Leonidovna
Sanitární, parazitologické a ekonomické posouzení metod dezinfekce odpadních vod a kejdy na farmách prasat
Stanovení dezinfekčního účinku nehašeného vápna na mikroflóru kalů z čistíren odpadních vod a chovů hospodářských zvířat
ZPŮSOBY DEZINFEKCE kejdy a kejdy
Problém znečištění životního prostředí nyní nabyl globálního významu. Vajíčka hlístů v tekutém hnoji snesená v otevřených sedimentačních nádržích v říjnu až listopadu zůstávají životaschopná po dobu 12 měsíců nebo déle a v hnoji jaro-léto po dobu 4-5 měsíců. Neinfikovaná kejda v zimě i v létě proto představuje vážnou hrozbu kontaminace nádrží, půdy, podzemních vod, krmiv a pastvin nebezpečnými patogeny pro lidi i zvířata. Tato okolnost vyžaduje provedení dezinsekce hnoje všech kategorií. Na základě výše uvedeného bylo účelem práce analyzovat stávající metody dezinfekce kejdy a kejdy. Všechny způsoby odčervování (desinvaze) hnoje a jeho frakcí lze rozdělit do tří skupin: biologické, fyzikální a chemické. Obecně se uznává, že biologické metody rozkladu organického odpadu jsou považovány za ekologicky přijatelné a nákladově efektivní. Některé z analyzovaných fyzikálních a chemických metod mají i určitou účinnost dezinfekce. Při použití těchto skupin dezinfekčních prostředků je nutné neustálé sledování a dodržování technologických parametrů, dále je třeba dodržovat normy spotřeby dezinfekčních prostředků a dobu expozice.
Text vědecké práce na téma „ZPŮSOBY DEZINFEKCE (DEZINVACE) kejdy a hnojné vody“
ZPŮSOBY DEZINFEKCE (DEZINVACE) kejdy A HNEJOVÉ VODY
Výzkumník v Laboratoři sanitárního a parazitologického monitoringu,
lékařská parazitologie a imunologie
Kandidát lékařských věd, vedoucí Laboratoře sanitárního a parazitologického monitoringu, lékařská parazitologie
Kandidát lékařských věd, vědecký pracovník, Laboratoř sanitárního a parazitologického monitoringu, lékařská parazitologie
Problém znečištění životního prostředí nyní nabyl globálního významu.
Vajíčka helmintů v tekutém hnoji umístěná v otevřených usazovacích nádržích v říjnu až listopadu zůstávají životaschopná po dobu 12 nebo více měsíců a v hnoji v období jaro-léto – 4-5 měsíců. V důsledku toho představuje nedezinfikovaná kejda v zimě i v létě vážnou hrozbu kontaminace vodních ploch, půdy, podzemních vod, krmiva a pastvin patogeny nebezpečnými pro lidi a zvířata. Tato okolnost určuje nutnost dezinsekce hnoje všech kategorií. Na základě výše uvedeného bylo účelem práce analyzovat stávající metody dezinsekce hnoje a hnoje. Všechny způsoby odčervování (dezinsekce) hnoje a jeho frakcí lze rozdělit do tří skupin: biologické, fyzikální a chemické. Obecně se uznává, že biologické metody rozkladu organického odpadu jsou považovány za ekologicky přijatelné a nákladově efektivní. Některé z analyzovaných fyzikálních a chemických metod mají i určitou dezinfekční účinnost. Při použití těchto
1 Federální rozpočtová instituce „Rostovský výzkumný ústav mikrobiologie a parazitologie“ Rospotrebnadzor (344000, Rostov-on-Don, Gazetny Lane, 119), rostovniimp@mail.ru
skupiny dezinfekčních prostředků vyžadují neustálé sledování a dodržování technologických parametrů, dále je nutné dodržovat spotřebu dezinfekčních prostředků a dobu expozice.
Klíčová slova: hnůj, odpadní vody, metody dezinfekce, dezinsekce, odčervení, vajíčka helmintů.
ZPŮSOBY DEZINFEKCE kejdy a kejdy
Hutoryanina IV 1,
Výzkumník Laboratoře sanitárního a parazitologického monitoringu,
lékařská parazitologie a imunologie
Kandidát lékařských věd, vedoucí Laboratoře sanitárního a parazitologického monitoringu, lékařské parazitologie a imunologie
Kandidát lékařských věd, vedoucí vědecký pracovník Laboratoře sanitárního a parazitologického monitoringu, lékařské parazitologie a imunologie
Problém znečištění životního prostředí nyní nabyl globálního významu. Vajíčka hlístů v tekutém hnoji snesená v otevřených sedimentačních nádržích v říjnu až listopadu zůstávají životaschopná po dobu 12 měsíců nebo déle a v hnoji jaro-léto po dobu 4–5 měsíců. Neinfikovaná kejda v zimě i v létě proto představuje vážnou hrozbu kontaminace nádrží, půdy, podzemních vod, krmiv a pastvin nebezpečnými patogeny pro lidi i zvířata. Tato okolnost vyžaduje provedení dezinsekce hnoje všech kategorií. Na základě výše uvedeného bylo účelem práce analyzovat stávající metody dezinfekce kejdy a kejdy.
Všechny způsoby odčervování (desinvaze) hnoje a jeho frakcí lze rozdělit do tří skupin: biologické, fyzikální a chemické.
Obecně se uznává, že biologické metody rozkladu organického odpadu jsou považovány za ekologicky přijatelné a nákladově efektivní.
Některé z analyzovaných fyzikálních a chemických metod mají i určitou účinnost dezinfekce. Při použití těchto skupin dezinfekčních prostředků je nutné neustálé sledování a dodržování technologických parametrů, dále je třeba dodržovat normy spotřeby dezinfekčních prostředků a dobu expozice.
1 Rostov Research Institute of Microbiology and Parasitology (119, Gazetny lane, Rostov-on-Don, 344000, Rusko)
Klíčová slova: hnůj, odpadní vody, způsoby dezinfekce, dezinsekce, odčervení, vajíčka helmintů.
Úvod. Průmyslová výroba vepřového a skotu si vyžádala organizaci systému zpracování významných objemů hnoje a hnoje. Závažnost tohoto problému z hlediska ochrany životního prostředí je dána velkým množstvím produkované kejdy a kejdy (stovky milionů m3 ročně), vyznačujícím se extrémním epidemickým nebezpečím [2].
Zároveň mnoho podniků živočišné výroby není vybaveno systémy pro efektivní zpracování a likvidaci organického odpadu. Na moderních prasečích farmách se sběr a zpracování kejdy provádí nejběžnějším a nízkonákladovým způsobem – hromaděním ve skladech kejdy (laguny) a uchováváním po dobu jednoho roku. Vajíčka helmintů v tekutém hnoji umístěná v otevřených usazovacích nádržích v říjnu až listopadu zůstávají životaschopná po dobu 12 nebo více měsíců a v hnoji v období jaro-léto – 4-5 měsíců.
V důsledku toho představuje nedezinfikovaná kejda v zimě i v létě vážnou hrozbu kontaminace objektů životního prostředí: půdy, podzemních vod, krmiva a pastvin patogeny parazitózy nebezpečnými pro lidi a zvířata. Tato okolnost vyžaduje provedení dezinfekce (dezinsekce) hnoje všech kategorií.
Účel práce: analyzovat stávající způsoby dezinsekce kejdy a drenáže kejdy na území Ruské federace.
Materiály a metody. Rozbor materiálů o použití metod dezinsekce hnoje a odpadů z hnoje byl proveden na základě rešerše literárních zdrojů a informací obdržených Referenčním centrem pro sledování larválních helmintiáz, působícím na bázi Rostovského výzkumného ústavu hl. Mikrobiologie a parazitologie Rospotrebnadzor z území 26 zakládajících subjektů Ruské federace.
Výsledky výzkumu. Všechny používané způsoby odčervování (dezinsekce) hnoje a jeho frakcí jak v Ruské federaci, tak v zahraničí jsou rozděleny do tří skupin: biologické, fyzikální a chemické [3].
Analýza ukázala, že hlavní metody používané pro dezinsekci odpadních vod hospodářských zvířat jsou biologické [1]. Mezi tyto metody patří: skladování ve skladovacích nádržích (laguny, haldy, zásobní nádrže), kompostování, anaerobní digesce a použití biologických inhibičně-stimulačních léčiv.
Obecně se uznává, že biologické metody rozkladu organického odpadu jsou považovány za ekologicky přijatelné a nákladově efektivní.
Biologický způsob odčervování (dezinsekce) zároveň spočívá v uchovávání podestýlky a steliva, tekuté a polotekuté kejdy a kejdy bez steliva v otevřeném skladu po dobu 3 až 12 měsíců v závislosti na sezónnosti plnění trusových výpustí.
Nejúčinnější proti parazitárním činitelům je kompostování a anaerobní vyhnívání. U většiny (61,5 %) areálů chovu prasat se jako hlavní metoda používá kompostování. Zároveň chybí informace o sledování dodržování požadované teploty po celou dobu (2-3 měsíce); jeho údržba je nedílnou součástí této metody.
Kromě biologických metod dezinsekce se v regionech používají metody fyzikální a chemické.
Mezi fyzikální metody patří: radiační, tepelná, ultrazvuková dezinfekce, kavitace, ultrafialové záření a dezinfekce elektromagnetickým polem.
Z fyzikálních metod používaných k dezinsekci kejdy ve studovaných oblastech si pozornost zaslouží pouze metoda termální, zaručující ztrátu životaschopnosti všech druhů helmintů a prvoků teplotou dosaženou v kejdě a používanou ve dvou složkách Ruská federace.
Existují další fyzikální metody dezinsekce hnoje a hnojových drenáží, které se v současné době příliš nepoužívají: záření – úplná smrt vajíček škrkavek nastává od dávky 1,3 kGy; dezinfekce elektromagnetickým polem – v alkalickém prostředí při pH 12,905-13,455 nebo s mikroadicí bělidla, síla magnetického pole 1500 Oe a expozice 30 minut.
Chemické metody jsou široce používány ve světové praxi pro dezinfekci hnoje a odpadních vod z hnoje pomocí různých činidel: formaldehyd, superfosfát, kyselina sírová, sádra atd.
Levné a dostupné dezinfekční prostředky jsou kyanamid vápenatý a nehašené vápno, které mají podle literatury ovicidní účinek.
V řadě zakládajících subjektů Ruské federace se používá amoniak a formaldehyd, které splňují požadavky regulačních dokumentů (SanPiN 3.2.3215-14 „Prevence parazitárních onemocnění na území Ruské federace“ a GOST 26074-84 „ Tekutá kejda. Veterinární a hygienické požadavky na zpracování, skladování, přepravu a použití“). Dezinfekce se provádí pomocí formaldehydu nebo amoniaku v hermeticky uzavřených nádobách vybavených homogenizačním zařízením.
Při použití všech výše uvedených metod dezinfekce je nutná neustálá kontrola a dodržování technologických parametrů.
V některých oblastech se pro účely dezinsekce bezdůvodně používá chlorace v koncentraci 15,3 %.
Problém dezinsekce kejdy a kejdy tedy zůstává aktuální a vyžaduje nové moderní přístupy a vývoj inovativních metod.
Závěr. Biotermální způsob dezinsekce kejdy a jejích frakcí včetně kompostování lze uznat jako efektivní a ekonomicky proveditelný ve vztahu k dezinsekci ošetřených substrátů, avšak pouze se zaručenou kontrolou dodržování parametrů doporučených pro neutralizaci (teplota, vlhkost, zádrž čas atd.) .d.).
Metody, které se neobjevují v regulačních dokumentech týkajících se dezinsekce hnoje a jeho frakcí (radiační a ultrazvukové efekty, kavitační efekty rotačních pulzačních zařízení, kombinované elektromagnetické a vibrační efekty, kombinace tvrdého ultrafialového frekvenčního spektra a silného elektromagnetického pole, neutralizace pomocí magnetodynamického čerpadla elektrolytu), lze v praxi použít pouze po provedení reprezentativních multicentrických vědeckých a praktických studií na
individuální programy za účasti výzkumných organizací a začlenění do stávajících regulačních dokumentů.
1. Belyaeva M.I., Stepanova T.F. O dezinsekci kejdy a hnoje v ustavujících subjektech Ruské federace // Infekce a imunita. 2017. č. S. P. 853.
2. Safiullin R.T., Novikov P.V. Sanitární-parazitologické a ekonomické hodnocení metod dezinfekce odpadních vod a hnoje na prasečích farmách // Russian Journal of Parasitology. 2016. T 37. Vydání. 3. s. 285-402.
3. Khutoryanina I.V., Dimidova L.L., Khromenkova E.P., Tverdokhlebova T.I. Metody a prostředky dezinsekce objektů životního prostředí // Zdraví populace a stanoviště. 2018. č. 3(300). s. 54-56.
1. Belyaeva MI, Stepanova TF. O dezinfekci kejdy a kejdy v předmětech Ruské federace. Infekce a imunita. 2017; S:853. (V Rusku.)
2. Safiullin RT, Novikov PV Sanitární parazitologické a ekonomické posouzení metod dezinfekce odpadních vod a kejdy v chovech prasat. Ruský parazitologický časopis. 2016; (37):285-402. (V Rusku.)
3. Hutoryanina IV, Dimidova LL, Khromenkova EP, Tverdokhlebova TI Metody a prostředky dezinfekce objektů životního prostředí. Zdraví populace a stanoviště. 2018; 3(300):54-56. (V Rusku.)
Problematika likvidace a dezinfekce hnoje a odpadních vod v průmyslovém chovu hospodářských zvířat je aktuální i dnes. Problém nabyl nejen medicínsko-veterinárního, ekonomického, ale i ekologického významu.
Nemocná zvířata a mikrobiální přenašeči, kteří nemají zjevné známky onemocnění, jsou extrémně nebezpeční jako uvolňovači patogenních (chorobu způsobujících) mikrobů do vnějšího prostředí.
Způsoby izolace patogenů infekčních chorob jsou různé. To závisí na povaze onemocnění, jeho patogenezi a také na druhu postižených zvířat. Existují infekční onemocnění, při kterých se patogeny vylučují především stolicí. Patří mezi ně: brucelóza, kolibacilóza, salmonelóza, paratuberkulóza, infekční enterotoxémie ovcí, úplavice prasat, virové průjmy, mor skotu, virová gastroenteritida prasat, klasický a africký mor, erysipel, botulismus, tetanus, nekrobakterióza, listerióza a další patogeny z těla zvířat mohou se vylučovat močí, dostat se do hnoje a odpadních vod: při brucelóze, leptospiróze, listerióze, slintavce a kulhavce, Aujeszkyho chorobě, moru skotu, klasickém moru, erysipelu prasat aj.
Existuje řada onemocnění, při kterých se patogen uvolňuje z těla zvířete do vnějšího prostředí jinými způsoby, například plícemi nebo výtokem z genitálií, ale může se dostat i do hnoje a odpadních vod. Mezi tato onemocnění patří: tuberkulóza, pasteurelóza, neštovice, kampylobakterióza.
V závislosti na formě a stádiu onemocnění se patogen uvolňuje z těla v různém množství. Při klinických projevech, zejména v akutních případech, je patogen neustále a ve velkém množství uvolňován do vnějšího prostředí. U řady nemocí, včetně velmi nebezpečných (vzteklina, mor prasat, slintavka a kulhavka aj.), je však původce izolován již v inkubační době před objevením se klinických příznaků onemocnění. jako z těla rekonvalescentních zvířat ve stádiu rekonvalescence, která po vymizení klinických příznaků může pokračovat v izolaci patogena až několik měsíců (mor prasat, Aujeszkyho choroba, salmonelóza atd.). Taková zvířata jsou méně aktivní v šíření patogenů, ale nejsou méně nebezpečnými zdroji infekčních agens, protože diagnóza je obtížná a není snadné je identifikovat.
Hnůj nemocných zvířat obsahuje původce infekčních chorob a je pro ně ochranným prostředím před působením nepříznivých faktorů, proto v něm zůstávají dlouhodobě: virus slintavky a kulhavky – 168 dní, brucelóza – 120 dní, tuberkulóza patogen – více než 7 měsíců, paratuberkulózní enteritida – až 11 měsíců, původce erysipelu prasat přetrvává v moči až 203 dní, ve výkalech – až 94 dní, vlna – až 194 dní, nekrobakterióza v moči – až 15 dní, ve zvířecích výkalech – až 50 dní. Původce dermatomykózy (mikrospory, trichofytóza) obsažený v postižených vlasech zůstává patogenní v hnoji déle než 8 měsíců. V tomto ohledu zůstává jedním z hlavních problémů epizootická úloha hnoje jako faktoru přenosu některých infekčních chorob zvířat.
Dezinfekce hnoje a odpadních vod chrání životní prostředí, lidi a zvířata před patogeny.
Dezinfekce hnoje a trusu znamená zničení infekčních (dezinfekce) a invazivních (zamoření) patogenů v nich.
Při výběru dezinfekčních prostředků, metod a způsobů dezinfekce zohledňují epizootickou situaci v zařízeních živočišné výroby a kontaminaci hnoje a trusu některými druhy patogenů, stupeň jejich odolnosti a nebezpečnost pro zvířata a člověka.
Volba prostředků, metod a režimů se provádí ve vztahu k odlišné struktuře hnoje, trusu a stupni zředění procesními vodami.
V závislosti na technologii chovu zvířat se získává hnůj s obsahem podestýlky, označovaný jako podestýlka (vlhkost 68-85 %), polotekutá (vlhkost 86-92 %), tekutá (vlhkost více než 97 %).
Odstraňování, zpracování, skladování, přeprava a využití hnoje, trusu a odpadů se provádí s přihlédnutím k požadavkům ochrany životního prostředí před znečištěním a vyloučením šíření původců infekčních a invazních nemocí včetně společensky nebezpečných (zoonóz).
Zařízení pro dezinfekci, skladování a přípravu k použití kejdy se umisťují mimo oplocení chovů a drůbežáren ve vzdálenosti minimálně 60 m od objektů pro chov hospodářských zvířat a 200 m od objektů pro drůbež. Vzdálenosti od skladovací plochy pro podestýlku, kompost a pevnou frakci k objektu pro chov hospodářských zvířat musí být nejméně 15 m a k bloku mléčných výrobků – nejméně 60 m.
Území objektů je oploceno 1,5 m vysokým plotem, chráněno trvalými lesními výsadbami (šířka ochranného pásu lesa min. 10 m), upravené, upravené, osvětlené, opatřené příjezdovými cestami a příjezdovou komunikací s příjezdovou cestou. tvrdý povrch o šířce 3,5 m.
Hnůj z izolačních a karanténních zařízení se shromažďuje a skladuje v samostatných karanténních kontejnerech, které by měly být umístěny na vlastním dvoře izolačního nebo karanténního zařízení. Dezinfekce, dezinsekce, přeprava a likvidace takového hnoje se provádí v souladu s platnými regulačními dokumenty.
Aby se vyjasnila epizootická situace, podniky zabývající se chovem hospodářských zvířat a drůbeže jsou povinny uchovávat všechny druhy hnoje a trusu po dobu nejméně šesti dnů. Doba trvání epizootického období se považuje do 45 dnů od začátku jejího výskytu.
Pro karanténu podestýlky, pevné frakce a podestýlky jsou konstruovány sekční sklady s tvrdým povrchem, pro karanténu ostatních druhů hnoje a jejich kapalné frakce jsou konstruovány sekční kontejnery. Pokud nejsou infekční onemocnění u zvířat registrována do šesti dnů, hnůj, trus a odpady jsou odváženy k dalšímu zpracování a použití.
V závislosti na epizootické situaci se hnůj a trus dezinfikují jedním z následujících způsobů: biologický (dlouhodobé stárnutí), chemikálie (amoniak nebo formaldehyd) a fyzické (tepelné zpracování nebo spalování).
Biologická metoda
Metoda biologické dezinfekce zahrnuje dlouhodobé stárnutí, biotermální úpravu, anaerobní vyhnívání a aerobní oxidaci.
Přirozená biologická dezinfekce podestýlky a nepodestýlkového hnoje a podestýlky infikované nesporotvornými patogeny (kromě tuberkulózy) se provádí umístěním v sekčních skladech hnoje nebo skladovacích nádržích po dobu 12 měsíců. Skladovací úseky naplněné polotekutým hnojem a stelivem jsou pokryty rašelinou, pilinami nebo dezinfikovanou hmotou hnoje a steliva o tloušťce 10-20 cm.
Hnůj kontaminovaný Mycobacterium tuberculosis se dezinfikuje skladováním po dobu 2 let.
Hnůj s vlhkostí do 75 % se dezinfikuje biotermální metodou volným ukládáním na hromady o rozměrech: výška do 2,5 m, šířka u základny do 3,5 m a délka libovolné velikosti.
Biotermální metoda dezinfekce hnoje je založena na vytváření vysokých teplot v hromadách hnoje, což má škodlivý vliv na patogeny infekčních chorob zvířat. Vysoké teploty jsou vytvářeny termofilními mikroorganismy, které se množí v hromadách hnoje za předpokladu, že se vzduch dostane do tloušťky hromady s určitou vlhkostí hnoje. Pro vytvoření aerobních podmínek je hnůj volně uložen na hromadách, což zabraňuje jeho zhutnění.
Je však třeba mít na paměti, že samozahřívací procesy v zimě jsou možné pouze ve stohu vyrobeném z čerstvého, nezmrzlého hnoje a s použitím silnější krycí vrstvy než v létě.
Při teplotách vzduchu pod 0 °C se k aktivaci biotermálního procesu v nezmrzlém a zmrazeném hnoji používá živá pára (horká voda) nebo čerstvý hnůj přidaný na hromadu. Hnůj v hromadách se ohřívá průchodem živé páry (horká voda) přes topné registry nebo baterie, které jsou umístěny na základně hromady.
Na betonovém místě se hromada položí na materiály pohlcující vlhkost (rašelina, nasekaná sláma, piliny, dezinfikovaný hnůj atd.) s vrstvou 35-40 cm a boční plochy se pokryjí vrstvou 15-20 cm .
Při absenci standardního skladu hnoje pro kladení hnoje vykopejte v zemi díru (asi 25 cm) a zhutněte do ní 15-20 cm vrstvu hlíny, na ni položte neinfikovaný hnůj ve vrstvě 50-60 cm Je na něj umístěn kontaminovaný hnůj.
Za začátek období pro dezinfekci podestýlky a pevné frakce kejdy se považuje den, kdy teplota ve střední třetině hromady v hloubce 1,5–2,5 m stoupne na 50–60ºС. Doba držení pilot v teplé sezóně je 2 měsíce, v chladné sezóně – 3 měsíce.
Při absenci aktivních termobiologických procesů a nemožnosti zvýšení teploty nad 40 °C jsou podestýlka, pevná frakce hnoje a kompost pro dezinfekci udržovány pod kontaminací vegetativními patogeny po dobu 12 měsíců a pro tuberkulózu – až 2 roky.
Bezpodestýlkový polotekutý hnůj a stelivo s vlhkostí 85-92% lze dezinfikovat přípravou kompostů s organickými sorbenty (nasekaná sláma, rašelina, piliny, kůra, lignin) v požadovaném poměru a ukládáním na hromady.
Aby se zabránilo šíření patogenů infekčních onemocnění, hromady nejsou znovu pokládány.
V případě infekčních onemocnění způsobených sporotvornými patogeny zvláště nebezpečných infekcí je zakázáno zpracování hnoje a trusu. Podestýlkový hnůj a kal z usazovacích nádrží se spalují; polotekutá, kejda a odpad z kejdy jsou podrobeny tepelné dezinfekci.
Hnůj a stelivo s obsahem vlhkosti do 75 % lze dezinfikovat v aerobních biofermentorech při fermentační teplotě 60-70ºC a expozici po dobu 7-10 dnů. Přidání inokula termofilních mikroorganismů do kompostu v množství 1,0 mil./g zpracované hmoty zkracuje dobu dezinfekce na 4-7 dní.
Dezinfekci kejdy a steliva bez steliva od nesporotvorných patogenů infekčních chorob lze provádět ve vyhnívacích nádržích (bioreaktorech).
Metody chemické dezinfekce jsou založeny na oxidaci enzymů v bakteriálních buňkách. Dezinfekční účinek má mnoho chemických činidel, z nichž nejčastější jsou amoniak, formaldehyd a látky obsahující chlór.
